Исследование рыбы на наличие гельминтозоонозов и других паразитов
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Подобные документы
Порядок отбора проб сырья растительного и животного происхождения. Ветеринарно-санитарная экспертиза мяса, яиц, рыбы, молока, растительных пищевых продуктов, грибов, меда, муки и крупы. Санитарные мероприятия на рынке и контроль качества дезинфекции.
отчет по практике , добавлен 13.12.2010
Дефекты и пороки копченой рыбы. Классификация кожевенно-мехового сырья, их первичная обработка и консервирование. Ветеринарно-санитарная экспертиза молока больных животных. Пороки куриных яиц и их ветеринарно-санитарная оценка. Правила маркировки яиц.
контрольная работа , добавлен 12.10.2012
курсовая работа , добавлен 18.12.2014
Характеристика рыбы как промышленного сырья. Ветеринарно-санитарные и технологические требования при консервировании рыбы. Консервирование холодом, посолом, вялением, сушкой, копчением: органолептическая и санитарная оценка. Правила маркировки консервов.
курсовая работа , добавлен 27.04.2009
Характеристика возбудителя, патогенеза и клинических признаков туберкулеза, бруцеллеза и лейкоза. Изучение патологоанатомических изменений в организме животных. Методика санитарно-гигиенического исследования пищевых продуктов животного происхождения.
курсовая работа , добавлен 03.12.2015
реферат , добавлен 19.10.2012
Общий порядок после убойного ветеринарно-санитарного осмотра туш и внутренних органов животных. Сбор эндокринного сырья. Ветеринарно-санитарная экспертиза мяса и мясопродуктов животных больных и переболевших ящуром. Санитарная оценка продуктов убоя.
курсовая работа , добавлен 12.03.2015
Санитарно-гигиенические нормы скота, птицы, рыбы и сырых животных продуктов. Ветеринарно-санитарная экспертиза как наука, изучающая методы исследования и санитарной оценки продуктов животного происхождения. Методы проведения послеубойного ветосмотра туш.
курсовая работа , добавлен 07.09.2015
Исследование проводят в следующем порядке: кожа, плавники, ротовая полость, жабры, глаза, кровь, сердце, брюшная полость (печень, селезенка, плавательный пузырь, мочевой пузырь, желчный пузырь, почки, половые железы, кишечник), мышцы, головной и спинной мозг.
Для обнаружения трипанозом и криптобий у рыбы берут кровь из сердца и делают мазки.
Для предотвращения свертывания крови добавляют 1 %-ный раствор лимоннокислого натрия, накрывают покровным стеклом и микроскопируют. Чтобы мазок не высыхал, края покровного стекла смазывают вазелином. Одновременно несколько мазков крови высушивают на воздухе, фиксируют в метиловом спирте, окрашивают по Романовскому - Гимзе или гематоксилином и микроскопируют.
При осмотре кожного покрова можно видеть пигментированные пятна (черного цвета). В этих местах в толще кожи локализуются метацеркарии Posthodiplostomum cuticula. На плавниках встречаются цисты сосальщика Bucephalus.
Споровики, некоторые инфузории и личинки сосальщиков могут быть и в соединительных образованиях (бугорках); обнаружить и извлечь их можно только после разрыва стенки бугорка с помощью препаровальной иглы. В кровеносных сосудах жабр встречаются яйца сангвиникол, споры и мицелий гриба.
Сердце вынимают вместе с крупными сосудами, помещают бактериологическую чашку с физилогическим раствором, вскрывают его полости, промывают образовавшийся осадок и микроскопируют на наличие возбудителя сангвиниколеза и некоторых метацеркариев.
Селезенку исследуют так же, как печень.
Мочевой пузырь . Методика исследования сходна с исследованием желчного пузыря. В мочевом пузыре обнаруживают сосальщиков, споровиков и инфузорий.
Головной и спинной мозг исследуют компрессорным методом. В этих органах можно обнаружить споровиков Myxosoma cerebralis Tetrocotyle variegateu.
Хрящи . Для обнаружения возбуителя миксозомоза (вертежа лососевых) компрессорным методом исследуют черепные и межпозвоночные хрящи.
Мазки крови окрашивают азур-эозином по Романовскому - Гимзе. Готовую краску Романовского перед окрашиванием разводят нейтральной дистиллированной водой из расчета 2 - 3 капли краски на 1 мл воды.
Слизистых споров окрашивают 1%-ным водным раствором метиленового синего 30 - 60 мин, затем препарат промывают в воде, последовательно проводят через спирты возрастающей крепости (70, 80, 96%-ный и абсолютный) и просветляют ксилолом.
Мелких цестод мождно окрашивать молочнокислым кармином по Блажину. Молочную кислоту разводят в 2 раза дистиллированной водой, добавляют небольшое количество кармина (в зависимости от желаемой степени окраски). Жидкость кипятят. Красить лучше свежие, нефиксированные объекты. Продолжительность окраски контролируют под микроскопом, а в случае перекрашивания объект переносят в цельную молочную кислоту для обесцвечивания. Окрашенный препарат промывают 20-60 мин водопроводной водой и помещают в бальзам.
При окраске крупных цестод этот способ модифицировали. Цестод промывают в проточной или часто сменяемой водопроводной воде при комнатной температуре летом один день, в холодное время года - 3-4 дня. Затем их помещают на 4-6 ч в краску (0,3 г кармина на 100 мл 30 %-ной молочной кислоты). Интенсивность прокрашивания контролируют под микроскопом. После этого на сутки их переносят в дистиллированную воду, в которую добавляют 3 капли раствора сернокислого железа и 2 капли 1%-ного раствора фенола. Далее цестод переносят на чистое предметное стекло, расправляют и высушивают при температуре 30-37°. Высохший очень плотно приставший к стеклу препарат заливают канадским бальзамом или канифолью, растворенной в смеси, состоящей из равных частей хлороформа и абсолютного спирта.
Для приготовления временных препаратов нематод не окрашивают, а кладут для просветления в неразведенную молочную кислоту или лактофенольный раствор (2 части глицерина, 1 часть молочной кислоты, 1 часть фенола и 1 часть воды) на 3-10 дней. Мелких гельминтов на 1-2 дня помещают в молочную кислоту (1-2 капли) и накрывают покровным стеклом.
Постоянные препараты для микроскопического исследования нематод готовят так. Фиксированных в 70 %-ном спирте живых гельминтов через сутки помещают на несколько часов (в зависимости от величины нематод) в 96 %-ный, а затем в абсолютный спирт на 3-5 мин. После этого их переносят в гвоздичное или хеноподиевое масло или карбоксилол на 2-5 мин, а затем кладут на чистое предметное стекло и заливают бальзамом.
Скребней (акантоцефалов) для изучения хоботка и крючков просветляют. Для этого их из 70 %-ного спирта переносят сначала в 50 %-ный глицерин, а затем в чистый. Структуру других органов изучают после полного обезвоживания гельминтов путем постепенного проведения их через спирты возрастающей крепости. Из абсолютного спирта гельминтов переносят на предметное стекло в каплю кедрового масла, покрывают покровным стеклом и микроскопируют.
Введение
1. Обзор литературы
1.2 Биология возбудителя
2 Собственные исследования
Заключение
Введение
Заражение человека и плотоядных происходит только при употреблении в пищу сырой (талой, мороженой, слабопросоленной) и недожаренной или непроваренной рыбы.
Метацеркарии описторхиса встречаются в мышечной ткани озерно-карповых. Озерные (карась, озерный гольян и др.), а также речные (сырть, усач и др.) карповые не заражаются даже в условиях эксперимента.
описторхоз рыба ветеринарная экспертиза
1. Обзор литературы
1.1 Описторхоз рыб и его распространение на территории Республики Казахстан
Своеобразие природных условий Республики Казахстан, особенности гидрологического режима обеспечивают стойкое функционирование очагов описторхоза . Это обусловлено значительной заражённостью рыб личинками возбудителя, большим удельным весом рыб семейства карповых (карп, лещ, карась, язь, чебак, плотва, линь, сазан) в рационе питания населения Северного и Центрального Казахстана, низким уровнем знаний мер профилактики данного гельминтоза. Хотя ещё в 1929 году исследованиями экспедиции под руководством К.И. Скрябина было выявлено широкое распространение описторхоза в бассейне Иртыша, до настоящего времени сохраняется высокий уровень заражённости рыб (80,0 - 90,0%) личинками Opisthorchis felineus .
1.2 Биология возбудителя
Зрелый описторх - это плоский червь длиной от 0,2 до 1,2 см и шириной до 0,3 см. Местом его обитания в организме хозяина являются желчные ходы печени, желчный пузырь и протоки поджелудочной железы.
1.3 Возбудитель описторхоза рыб и его устойчивость к ряду физических и химических факторов
Метацеркарии в живой рыбе сохраняют свою жизнеспособность и инвазионность 5 - 8 лет. Весьма устойчивы они к воздействию низких температур. В замороженной рыбе личинки утрачивают жизнеспособность при - 40°C до 7 ч, при - 35°C до 14 ч, при - 28°C - 32 ч. Замораживание рыбы при более высокой температуре не гарантирует ее полного обеззараживания. Метацеркарии чувствительны к высоким температурам. После выделения из рыбы они погибают при 55°C в течение 5 мин. При засолке, если доля соли в рыбе равна 14%, а плотность тузлука составляет 1,2, метацеркарии выживают в мелкой рыбе от 10 до 21 суток (в зависимости от вида рыбы), а в крупной, длиной свыше 25 см (язи, лещи, лини), - до 40 суток.
2 Собственные исследования
2.1 Объекты, методы и материалы
Объектами исследования являлись возбудитель Opisthorhis felineus, рыбы из семейства карповых - карась.
Для обнаружения метацеркариев в тканях рыбы использовался компрессионный. Более точные результаты были получены при исследовании всей поверхностной мышечной ткани рыбы, которая тщательно отделялась вместе с подкожно-жировой клетчаткой от кожи и плавников.
Компрессионный метод. Для компрессионного исследования с целью экономии времени исследовали по 5 проб мышц с подкожной клетчаткой с обеих сторон рыбы: по 3 пробы из спинной и 2 из брюшной части мышц с каждой стороны. Каждая проба мышц бралась с площади 1 - 2 кв. см на глубине 2 - 3 мм.
Мышечную ткань, подлежащую исследованию, измельчали и порциями по 1 - 1,5 г раскладывали между двумя стеклами размером 6 - 8 х 12 - 15 см.
Готовые компрессионные препараты просматривали под бинокуляром при увеличении в 16 раз. Было найдено 4 метацеркария.
2.1.2 Органолептические методы исследования
У рыб пораженных метацеркариями описторхоза, внешние изменения отсутствовали.
2.1.3 Физико-химические методы исследования
Определение аммиака. Метод основан на взаимодействии аммиака, образующегося при порче рыбы, с соляной кислотой и появлении при этом облачка хлористого аммония.
Проведение анализа. В широкую пробирку наливали 2-3 см3 смеси Эбера, закрывали пробкой и встряхивали 2-3 раза. Вынимали пробку из пробирки и сразу же закрывали ее другой пробкой, через которую продета тонкая стеклянная палочка с загнутым концом. На конец палочки прикрепляли кусочек исследуемого мяса рыбы с температурой близкой к температуре воздуха в лаборатории в момент проведения анализа. Мясо вводили в пробирку так, чтобы не запачкать стенок пробирки и чтобы оно находилось на расстоянии 1-2 см от уровня жидкости.
Обработка результатов. Через несколько секунд в результате реакции аммиака с соляной кислотой должно образовываться облачко хлористого аммония. Интенсивность реакции оценивали следующим образом: - реакция отрицательная; + реакция слабоположительная (быстро исчезающее расплывчатое облачко); ++ реакция положительная (устойчивое облачко, проявляющееся через несколько секунд после внесения мяса в пробирку с реактивом); - Н-+ реакция резко положительная (облачко появляется сразу после внесения мяса в пробирку с реактивом).
Определение сероводорода. Метод основан на взаимодействии сероводорода, образующегося при порче рыбы, со свинцовой солью с появлением темного окрашивания вследствие образования сернистого свинца.
Проведение анализа. 15-25 г исследуемого фарша из спинной мускулатуры рыб помещали рыхлым слоем в бюксу вместимостью 40-50 см3. В бюксу подвешивали горизонтально над фаршем полоску плотной фильтровальной бумаги, на поверхность которой, обращенной к фаршу, нанесены 3-4 капли раствора свинцовой соли диаметром 2-3 мм. Расстояние между бумагой и поверхностью фарша 1 см. Бюксу закрывали сверху крышкой, зажимая фильтровальную бумагу между крышкой и корпусом бюксы, и оставляли стоять при комнатной температуре. Параллельно проводили контрольный анализ без навески продукта. По истечении 15 мин бумагу снимали и сравнивали ее окраску с окраской бумаги, смоченной тем же раствором свинцовой соли (контрольный анализ). При наличии в исследуемом образце свободного сероводорода происходит побурение или почернение участков бумаги, смоченных раствором свинцовой соли.
Интенсивность реакции обозначали следующим образом: - реакция отрицательная; ± следы окрашивания капли; + реакция слабоположительная; ++ реакция положительная (бурое окрашивание всей капли, более интенсивное по краям); +++ реакция резко положительная (интенсивное темно-бурое окрашивание всей капли).
Определение рН. К 5 г фарша мяса рыбы добавляли 50 мл дистиллированной воды и настаивали в течение 30 мин при периодическом перемешивании, затем пропускали через бумажный фильтр. Фильтрат использовали для исследования. Определяли рН рН-метром (Hanna рН 211). Учитывали, что у рыбы свежей фильтрат слегка опалесцирует (рН до 6,9); у рыбы сомнительной свежести фильтрат слегка мутноватый (рН 7,0-7,2); у рыбы несвежей фильтрат мутный, запах неприятный (рН 7,3 и выше).
Реакция на пероксидазу. В бактериологическую пробирку вносили 2 мл водной вытяжки (1: 100) из жаберной ткани и добавляли 5 капель 0,2% -ного спиртового раствора бензидина. Содержимое пробирки встряхивали, после чего вносили две капли 1% -ного раствора перекиси водорода.
2.1.4 Методы определения химического состава мяса рыбы
Для определения химического состава мяса рыб использовали пробы свежей снулой рыбы (из спинной мускулатуры карасей двухлеток), выловленных из озера Большое в районе Узынколь.
Определение массовой доли воды высушиванием при 100-105 С. Метод основан на испарении воды из продукта при тепловой обработке и определении изменении массы его взвешиванием.
Навеску спинной мускулатуры от 1,5 до 2 г, взвешенную с абсолютной погрешностью не более 0,001 г, помещали в чистую высушенную и тарированную бюксу со стеклянной палочкой, при помощи которой распределяли навеску продукта в бюксе ровным тонким слоем. Бюксу закрывали притертой крышкой, взвешивали на аналитических весах и высушивали в сушильном шкафу при 100-105 градусах до постоянной массы. Первое взвешивание проводили через З ч после начала сушки, последующие - через 30-40 мин. Постоянная масса считалась достигнутой, если разница между двумя взвешиваниями не превышала 0,001 г. В бюксу предварительно вносили 5-10 г песка и навеску продукта тщательно перемешивали.
Массовую долю Х3 в процентах вычисляли по формуле Х3 = (mrm2) 100/mi-m, где m - масса бюксы с песком г, т\ - масса бюксы с навеской и песком до высушивания, г; т2 - масса бюксы с навеской и песком после высушивания, г.
За окончательный результат принимали среднее арифметическое результатов двух параллельных определений, допускаемые расхождения между которыми не превышало 0,5%.
Определение массовой доли белка по Къельдалю. Метод основан на окислении органического вещества при сжигании его в серной кислоте в присутствии катализатора, отгонке образующегося аммиака паром, улавливании его раствором серной кислоты и определении содержания азота методом титрования.
Навеску мышечной ткани массой 0,6-1 г взвешивали с абсолютной погрешностью не более 0,0005 г, помещали в колбу для сжигания вместимостью 100 см, добавляли несколько мелких кристаллов медного купороса и приливали 10-20 см3 серной кислоты плотностью 1840 кг/м. Колбу осторожно нагревали в вытяжном шкафу, не допуская разбрызгивания жидкости. Когда содержимое колбы становилось однородным, прекращали нагревание, давали остыть, добавляли 0,5 г сернокислого калия и продолжали нагревание до тех пор, пока жидкость в колбе не становилась прозрачной, зеленовато-голубой окраски без бурого оттенка. По окончании сжигания содержимое колбы охлаждали и количественно переносили в отгонную колбу вместимостью 500-750 см. Приемником служила коническая колба вместимостью 250-300 см, с 25-30 см серной кислоты 0,05 моль/дм. Конец трубки холодильника погружали в раствор серной кислоты. В отгонную колбу осторожно, по стенкам, избегая смешивания жидкостей, приливали 50-70 см раствора гидроокиси натрия 330 г/дм, бросали кусочек лакмусовой бумаги и быстро закрывали ее пробкой, соединенной посредством каплеуловителя с холодильником, осторожно перемешивали содержимое и нагревали. Реакция жидкости в колбе должна быть резко щелочной. После закипания жидкости в колбе приемник опускали так, чтобы конец трубки холодильника находился на некотором расстоянии от поверхности раствора и продолжали отгонку до тех пор, пока не отгонится не менее 2/3 жидкости. Конец отгонки определяли по лакмусовой бумаги. Если отгонка закончена, капля дистиллята не должна вызывать посинения красной лакмусовой бумаги. По окончании отгонки конец трубки холодильника обмывали водой в приемную колбу и содержащийся в ней избыток серной кислоты оттитровывали раствором гидроокиси натрия 0,1 моль/дм в присутствии метилового красного. Одновременно проводили контрольный анализ без навески исследуемого образца.
2.1.5 Санитарно-микробиологические методы исследования
Использовали окрашивание раствором розоловой кислоты (аурина).
Кусочки мышц с личинками освобождали от жира. На ткань наносили капли розоловой кислоты, а через 2 мин - 0,1 н раствор гидроксида калия, равномерно распределяя его по ткани. Избыток жидкости с препарата снимали фильтровальной бумагой. Накрывали покровньм стеклом и микроскопировали. В этих опытах ткань рыбы окрашивалась в розовый цвет, живые личинки совершенно не окрашивались; мертвые личинки становились розовыми.
Определяли также путем высевания на мясопептонный агар в 2 параллельные чашки, определяли путем посева на среду Кесслер и последующим пересевом положительных проб на плотную дифференциальную среду Эндо; S. Aureus определяли путем посева на солевой рыбопептонный бульон и последующим пересевом на элективную среду - желточно-солевой агар; бактерии рода Salmonella определяли при посеве на среду обогащения (селенитовый бульон) с последующим пересевом в чашки Петри на плотную дифференциально-диагностическую среду - висмут-сульфит агар; бактерии L. monocytogenes определяли путем посева на селективную среду для предварительного обогащения (бульон Фразера) и последующего пересева на селективно-диагностическую среду ПАЛ.
Изучение микробиологических показателей показало, что из мяса рыбы с ИИ более 51 экз. выделена культура кишечной палочки серотипа О19 в одной пробе, а также отмечено превышение КМА-ФАнМ в одной пробе, что превышает допустимую норму по СанПиН 2.3.2.1078-01. Выделение условно-патогенных микроорганизмов из опытных проб рыб, пораженных описторхозом, по-видимому, можно объяснить их проникновением вместе с личинками во время их проникновения через кожный покров рыб, их миграции и в связи с этим ослаблением общей резистентности организма рыб.
2.2 Методы обезвреживания рыбы, пораженной описторхозом
Тепловые обработки являются самыми надежными:
варить рыбу в течение 15-20 минут с момента закипания воды, кусками не более 150г. (крупные экземпляры разрезать на куски);
жарить небольшими кусками весом не более 100 г. в распластанном виде кожицей вниз под крышкой на слабом огне в течение 20-25 минут с каждой стороны в обильном количестве масла;
солить мелкую рыбу в течение 14 дней, крупную (свыше 25 см) в течение 40 суток с добавлением 2 кг соли на 10 кг рыбы, или 200 г соли на 1 кг рыбы, а при плюсовой температуре из расчета 3,5 кг соли на 10 кг рыбы, но вялить 2-3 недели в зависимости от климатических условий (если дождливая погода - то вялить более 3-х недель) с последующим вымачиванием;
вялитьпо вкусу с предварительным посолом - в течение 2-х недель (вяление рыбы не является способом обезвреживания, если не выдержана технология засола);
горячее копчение при температуре 70-80о в течение 2,5 ч, не рекомендуется солить и вялить язя в домашних условиях,
использованный разделочный инвентарь прокипятить в течение 3-5 минут и хорошо промыть с использованием моющих средств,
3. Исследования по сравнительной оценке методов индикации, определения жизнеспособности и дифференциальной диагностики метацеркарий o. felineus
Стоить отметить также, что большинство из исследованных нами рыб были инвазированы другими метацеркариями трематод, а именно: Paracaenogonimus ovatus (сем. Prohemistomidae), Bolbophoras confiisus (сем. Posthodiplostomidae).
Видовую принадлежность метацеркарий определяли по Сударикову В.Е. (2002). Их нужно дифференцировать исходя из анатомо-морфологических признаков, имея в виду, что до наших исследований не указывалось на наличие этих трематод. Принцип дифференциации указанных видов трематод основан на строении метацеркарий, размеру и форме цист, размеру и форме метацеркарий, освобожденных из цисты.
При обнаружении личинок в рыбе, в том числе при оценке эффективности ее обеззараживания, необходимо определять их жизнеспособность. Нами проведена сравнительная оценка ряда методов определения жизнеспособности личинок описторхисов.
По морфологическим признакам. Метацеркарий трематод, выделенных из тканей рыбы с помощью препаровальной иглы, помещали в каплю теплой воды или физраствора (37-40 градусов) на предметное стекло, накрывали покровным стеклом и исследовали под малым и большим увеличением микроскопа. Явное нарушение целости оболочек цист, грубые изменения внутреннего строения личинки, распад ее содержимого, разрушение экскреторного пузыря являются признаками гибели метацеркарий. Отсутствие указанных показателей свидетельствует о наличии живых личинок.
Метод механического воздействия. Как известно, метацеркарий обладают способностью совершать движения, находясь в цисте. Наличие даже самых слабых самостоятельных движений личинки свидетельствует о ее жизнеспособности. В этой связи движение личинок стимулировали слабым придавливанием метацеркарий покровным стеклом.
Метод химического воздействия. Вызвать движение личинок можно желчью животных или трипсином. На выделенных метацеркарий наносили несколько капель химического реагента так, чтобы полностью покрыть личинок. Для ускорения эксцистирования предметное (часовое) стекло с личинками слегка подогревали над пламенем спиртовки. Через несколько секунд под воздействием химического раздражителя начинался выход личинок из цист и их активное движение, что служило показателем жизнеспособности. Процесс эксцистирования личинок контролировали под микроскопом. При отсутствии в течение 30 мин всякой двигательной реакции следует учитывать как гибель личинок.
Заключение
Проведенными исследованиями определено, что процент обнаружения метацеркарий в разных группах мышц неодинаков и составляет в среднеспинных мышцах - 51,52%, переднеспинных - 28,84%, верхнехвостовых 15,94%, грудных - 1,52%, брюшных - 1,33% и нижнехвостовых - 0,85%.
Установлено, что описторхоз рыб может протекать как моноинвазия, так и в смешанной форме (в большинстве случаев) с поражением метацеркариями других трематод, что необходимо учитывать при постановке диагноза на описторхоз.
При внешнем осмотре и патологоанатомическом исследовании рыб, пораженных описторхозом, клинических симптомов болезни и видимых патологических изменений в органах и тканях не отмечается, за исключением отставания в росте на 7,4% и уменьшении массы тела на 1,5% у рыб с высокой интенсивностью инвазии в сравнении со здоровой, а также наличия дегенеративных изменений в виде зернистой дистрофии небольших участков мышечной ткани с утраченной поперечной исчерченностью и разрастанием соединительной ткани вокруг метацеркарий.
Установлено, что по органолептическим и физико-химическим показателям мясо рыб, пораженных описторхозом, находится в пределах требований к доброкачественной рыбе и не зависит от ее интенсивности инвазии.
По результатам санитарно-микробиологического исследования мясо рыб с низкой и средней интенсивностью инвазии соответствуют требованиям существующих нормативов содержания микрофлоры, а при высокой интенсивности отмечено превышение уровня содержания кишечной палочки.
При изучении химического состава мяса рыб, пораженных описторхозом, выявлена зависимость, что чем выше интенсивность инвазии, тем больше содержание влаги в нем и тем меньше белка, жира, золы, кальция и фосфора и ниже калорийность, что указывает на более низкую энергетическую ценность, особенно мяса рыб с высокой ИИ (87,17 ккал) в сравнении со здоровой рыбой.
Проведенными исследованиями определена тенденция достоверного снижения относительной биологической ценности (на 2,7%) мяса рыб, пораженных описторхозом, при высокой степени инвазии.
Список использованной литературы
Артемьева С.А. и др. Микробиологический контроль мяса животных, птицы, яиц и продуктов их переработки. М.: Колос, - 2003 г. - 288 с.;
Белоусов В.И. Надзор за безопасностью в ветеринарном отношении продуктов аквакультуры. Сборник "Эпизоотический мониторинг в аквакультуре: состояние и перспективы". - М.: - 2005 г. - 100 с.;
Беэр С.А. Биология возбудителя описторхоза. М. - КМК. - 2005г. - 336с.;
Репетиторство
Нужна помощь по изучению какой-либы темы?
Наши специалисты проконсультируют или окажут репетиторские услуги по интересующей вас тематике.
Отправь заявку
с указанием темы прямо сейчас, чтобы узнать о возможности получения консультации.
Обследование внутренних органов начинают с внешнего осмотра. На серозных покровах органов или под ними могут быть обнаружены инкапсулированные личинки цестод и нематод. Особое внимание нужно обращать на личинок нематод, свернутых в плоские спирали.
Обследование мускулатуры ведется используя методы: параллельных разрезов мышечной ткани (разрезают поперек волокон на ломтики толщиной 5-10мм и просматривают их в падающем свете); просмотра мышечной ткани на просвет (с подсветкой снизу); просмотра сдавленных между двумя стеклами кусочков мышечной ткани - компрессорный метод.
Потенциально опасны гельминты, личинки которых находятся в рыбе в живом состоянии. Поэтому следует определить их жизнеспособность. Исследования проводят в отношении личинок, обнаруженных в свежей и охлажденной рыбе, если ее предполагается в таком виде направить на пищевое использование. В мороженой рыбе определение жизнеспособности личинок производится только в том случае, если со времени ее заморозки прошло менее двух месяцев. В течение этого срока все личинки в мороженой рыбе погибают.
Определение жизнеспособности личинок гельминтов может осуществляться следующими методами:
М е т о д ф и з и ч е с к о г о р а з д р а ж е н и я. Личинок нематод, цестод и скребней помещают в бактериологическую чашку на фильтровальную бумагу, обильно смоченную физиологическим раствором. Личинок рассматривают в бинокуляр. Если личинки живые, то через 1-2мин. можно заметить их слабую подвижность. Их движения можно стимулировать уколом личинки препаровальной иглой. Если личинка жизнеспособная, то укол вызывает сокращение тела. Метацеркарии трематод, заключенные в цисту, помещают на предметное стекло, добавляют сверху несколько капель воды или физраствора, накрывают сверху другим стеклом и помещают под микроскоп. Просмотр цист в течение нескольких минут позволяет заметить медленное движение внутри их метацеркариев, если они живые. Стимулировать движения можно путем осторожного надавливания на верхнее стекло, чтобы было видно легкое сдавливание оболочек цист.
М е т о д э л е к т р и ч е с к о г о с т и м у л и р о в а н и я. Применяется только к личинкам нематод, цестод и скребней (но не к метацеркариям трематод) и требует наличия источника слабого постоянного тока (0,5-1,5 В). Два тонких изолированных провода от положительного и отрицательного по-
люсов элемента подводятся к двум препаровальным иглам. Личинок, лежащих в тонком слое воды или на мокрой фильтровальной бумаге, нужно коснуться одновременно обеими иглами, наблюдая под бинокуляром наличие или отсутствие движения.
М е т о д х и м и ч е с к о г о в о з д е й с т в и я применим особенно к метацеркариям трематод. Личинок помещают в маленький объем 0,5%-го раствора трипсина, приготовленного на физрастворе (лучше при 36-37 о С). Если личинки жизнеспособны, раствор стимулирует их движение, а инцистированные метацеркарии трематод начинают выходить из цист (в течение 5 мин.).
При подозрении на зараженность рыб возбудителями гельминтозоонозов (описторхоз, клонорхоз, дифиллоботриоз и др.) в лабораторию направляют 15 экземпляров каждого вида рыб из данного водоема, партии или упаковки. Мелкие рыбы берут целиком, от крупных рекомендуют брать пробы.
МУК 3.2.988-00
МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ
Дата введения 2001-01-01
УТВЕРЖДАЮ
Главный государственный санитарный врач Российской Федерации - Первый заместитель министра здравоохранения Российской Федерации Г.Г.Онищенко 25 октября 2000 г.
1. Область применения и общие положения
1. Область применения и общие положения
1.4. Объектами
исследований
являются промысловые пресноводные и морские рыбы,
моллюски, ракообразные, земноводные, пресмыкающиеся и продукты их
переработки.
1.6. При исследовании
гидробионтов и продуктов их переработки следует соблюдать режим
работы с инвазионным материалом, регламентированный санитарными
правилами 1.2.731-99 *
"Безопасность работы с микроорганизмами III-IV групп патогенности и
гельминтами".
_______________
*
Действуют СП
1.3.2322-08 . - Примечание изготовителя базы данных.
2. Отбор, хранение и подготовка к анализу проб гидробионтов и продуктов их переработки
1. Химические реактивы:
глицерин; эфир или хлороформ
2. Кюветы
эмалированные
3. Чашки Петри
4. Пинцеты хирургические
и глазные
5. Препаровальные
иглы
6. Химические стаканы
7. Кастрюли
эмалированные
8. Электроплитка
9. Холодильник
10. Весы с набором
разновесов или весы электронные
11. Сантиметр или
линейка
12. Марля, вата
13. Фильтровальная
бумага
Дифференциальные признаки плероцеркоидов сем. Diphyllobothriidae, опасных для здоровья человека
|
Вид гельминта |
Дополнительные
хозяева (рыбы, земноводные, пресмыкающиеся) |
Локализация в теле хозяина |
Наличие или отсутствие капсул |
Строение и размеры плероцеркоида |
|
|
Diphyllobothrium latum (Лентец широкий) |
Пресные
водоемы и опресненные участки морей севера Евразии (РФ, Латвия,
Литва, Эстония, Финляндия, Дания, Швеция, Польша, Швейцария), Сев.
Италии и Америки (США, Канада); бассейны Волги, Дуная, Днепра,
сибирских рек |
Щука, налим, окунь обыкновенный, ерш, сом, судак обыкновенный, берш, окунь желтый, судаки светлоперый и канадский |
Полость тела, икра, внутренние органы, мышцы |
Обычно без капсул |
Личинки беловато-молочного цвета, длиной от нескольких мм до 7 см. На теле и сколексе нет заметных под световым микроскопом ворсинок. Характерно наличие на теле личинки глубоких складок, которые частично сохраняются и после расслабления в воде. Сколекс с двумя щелевидными ботриями обычно втянут |
|
D. dendriticum (Лентец чаечный) |
Пресные водоемы севера Европы (РФ, Литва, Латвия, Эстония, Финляндия, Норвегия, Швеция, Польша, Германия, Ирландия, Великобритания) и Америки (Канада, США); пресные водоемы Сибири (РФ), Дальнего Востока (Сахалин), оз. Иссык-Куль |
Пелядь, омуль,
сиг, голец, семга, лососи (Кларка, стальноголовый), муксун, чир,
хариусы (сибирский и европейский), тугун, кумжа, таймень, ленок,
ряпушка сибирская и североамериканская, палия обыкновенная и
американская, кижуч, корюшка, османы (алтайский, голый), налим,
широколобки (большеголовая, жирная, длиннорылая) |
На стенках и в толще стенок пищевода и желудка, реже на других органах и в мышечной ткани |
Обычно в капсулах диаметром 2,2-11 мм. При локализации в икре, как правило, без капсул. У некоторых видов (например, сибирская ряпушка) наряду с личинками в капсулах, встречаются и свободно залегающие в полости тела плероцеркоиды |
Личинки
светлого кремового цвета. Длина 1-10 см, иногда до 20 см. После
расслабления в воде складчатость слабо выражена. Сколекс четко
отграничен от тела. Он обычно втянут или частично вытянут, при этом
участки тела вокруг него образуют подобие "плечиков". Края
ботридиальных листков выглядят фестончатыми. У расслабленных
личинок сколекс приобретает овально-миндалевидную форму,
ботридиальные щели раскрываются широко. Тело покрыто ворсинками
длиной 7-11 мкм, которые на сколексе едва заметны |
|
D. luxi (D. klebanovskii) (Лентец дальневосточный) |
Д. Восток,
Чукотка, моря Тихого океана и бассейны рек, впадающих в них, в
границах ареала дополнительных хозяев гельминта, за исключением
северной части зап. Триохотья. Ареал Э. luxi не пересекается с
ареалом D. latum |
Кета, горбуша, сима, кунджа, сахалинский таймень |
Вся дорсальная мускулатура |
Овальные капсулы с прозрачными стенками (4-6х2-5 мм). В мускулатуре горбуши раннего хода и симы личинки залегают без капсул или находятся на разных стадиях инкапсуляции |
Плероцеркоиды морфологически сходны с личинками D. latum, но в отличие от них обычно инкапсулированы. Поры фронтальных желез располагаются на сколексе и теле личинки |
|
D. dhremum |
Пресные водоемы севера Европы, Азии и Америки (на юг до 40-50° с. ш.) |
Семга, форель,
арктический голец, палия американская, ряпушки (сибирская,
европейская), омуль, сиг обыкновенный, пелядь, тугун, хариусы
(сибирский, европейский), корюшки (европейская, зубастая), налим,
колюшки (трехиглая и девятииглая) |
Серозные покровы пищеварительного тракта (пищевод, желудок, пилорические придатки), реже на других внутренних органах |
В капсулах |
Плероцеркоиды белого цвета, длиной 6-12 мм, после расслабления и гибели в воде тело равномерно вытянутое, палочковидное, без складок, сколекс отграничен от тела. Тело и сколекс покрыты ворсинками длиной 0,01-0,03 мм. Выживает в воде не более 10 мин |
|
Pyramicocephalus phocarum |
Субарктическая и арктическая зоны Мирового океана |
Тресковые
(треска, минтай, сайка, навага, пикша); скорпеновые (окунь-клювач);
рогатковые (рогатка, керчак), пинагоровые (пинагор); камбаловые
(камбалаершоватка, камбала-ерш, камбала морская), палтус |
Полость тела и сероза внутренних органов (печень, пилорические придатки желудка); у минтая и наваги встречается в скелетной мускулатуре |
Без капсул |
Морфологически сходны с личинками p. Diphyllobothrium. Длина тела 8-25 мм, до 40 мм, ширина 1-3 мм. Обычно тело в складках. Сколекс относительно массивный, булавовидно-стреловидной формы (размеры сколекса 2x1 мм) |
|
Spirometra erinacei-europaei |
Европа и Азия. В РФ чаще всего встречается в дельте Волги, Приморье, на Сахалине |
Земноводные (лягушка озерная, прудовая); Пресмыкающиеся (уж водяной, уж обыкновенный, полозы) |
У лягушек - в мышцах (чаще в бедрах), в полости тела, между петлями кишечника, во внутренних органах. У змей в подкожной клетчатке, полости тела, мускулатуре, межмышечной соединительной ткани |
Обычно без капсул, у змей иногда в тонких капсулах на кишечнике или подкожно |
Личинки
молочно-белого цвета. Длина от 5 мм до 30 см и более, в зависимости
от возраста и степени сокращения личинки. Выделенный из хозяина
плероцеркоид характеризуется присутствием на теле узлов сокращения,
чередующихся с расслабленными участками тела. В сокращенных
участках тело широкое и плоское, с глубокими поперечными складками,
в расслабленных участках - узкое и лишенное складчатости. Передний
конец тела обычно сокращен сильнее других участков. Сколекс
небольшой, от тела не обособлен, втянут внутрь и обычно повернут в
сторону. Ботрии значительно короче, чем у других дифиллоботриид
(0,2-0,4 мм) |
2.1.2. До начала
исследования рыбы, моллюсков, ракообразных, земноводных и
пресмыкающихся следует точно определить видовую принадлежность
исследуемого экземпляра и, руководствуясь табл.1-4 и п.4.4
настоящего документа и табл.9 СанПиН 3.2.569-96 (прилож.3),
определить, потенциальными носителями каких видов гельминтов,
опасных для здоровья человека, он является.
Следует помнить, что один
и тот же вид позвоночного или беспозвоночного может служить
дополнительным или резервуарным (факультативным) хозяином для
нескольких видов гельминтов.
2.1.3. Сохранять
свежевыловленную рыбу и нерыбных промысловых гидробионтов до
исследования следует в охлажденном состоянии (в холодильнике), не
допуская кристаллизации, либо в слегка подвяленном на воздухе виде
не более 3-5 дней.
2.1.4. Перед
исследованием рыбу (или нерыбный объект промысла) отмывают от
слизи, протирают, взвешивают, измеряют длину и делают в журнале
записи, касающиеся учета исследований (раздел 7).
2.1.5. Для определения
возраста у рыб с циклоидной чешуей последнюю берут с переднебоковой
поверхности выше боковой линии в количестве 15-20 крупных чешуек. У
рыб с ктеноидной чешуей, а также с голой кожей берут отолиты или
колючий шип грудного плавника.
2.1.6. Для исследования
на наличие метацеркарий Metagonimus yokogawai
и
Metagonimus katsuradai
отбирают по 20 чешуек из разных
частей тела рыбы в спинной области, у карася - вдоль боковой линии.
Крупные чешуйки (у сазанов, карасей) перед исследованием
просветляют в течение 15-20 мин в 50%-ном растворе глицерина.
2.1.7. Перед
исследованием живых раков и крабов рекомендуется поместить в
кипящую воду на 0,5-1,5 мин (в зависимости от размеров
ракообразных) до прекращения движения или усыпить их эфиром (или
хлороформом).
2.2. Хранение и
подготовка к анализу рыбной продукции при лабораторном исследовании
на производстве, при сертификации, инспекционном
контроле
2.2.1. Сохранять свежих
или охлажденных гидробионтов и продукты их разделки до исследования
следует в холодильнике при температуре 2-4 °С. Замороженная
рыбопродукция (сырье, полуфабрикаты и готовые изделия) до
исследования хранится при температуре и в условиях согласно
нормативно-технической документации на нее.
2.2.2. Непосредственно
перед исследованием мороженую рыбную продукцию размораживают до
температуры не ниже 0 °С в толще тела рыбы, моллюсков,
ракообразных, земноводных, пресмыкающихся и продуктов их
переработки. Живых ракообразных усыпляют (см. п.2.1.8).
2.2.3. При исследовании
вяленой, соленой и копченой рыбы ее предварительно вымачивают в
течение суток до размягчения мышц, меняя воду каждые 4-6 ч.
2.2.4. Соленую икру
(зернистую, паюсную, ястыковую) выдерживают в воде в течение 2-3 ч.
Другие виды рыбной продукции (пресервы, жареная рыба, фарш и пр.)
специальной подготовки не требуют и сохраняются в холодильнике до
начала исследования.
2.2.5. О видовой
принадлежности исследуемого образца судят по документам,
сопровождающим пробу. При поступлении гидробионтов в виде,
позволяющем произвести видовое определение, следует его
уточнить.
Необходимые реактивы и
оборудование:
1. Химические реактивы:
физиологический раствор
2. Предметные стекла
3. Большие предметные
стекла (6-8х12-15 см, толщиной 3-5 мм) или компрессорий
4. Кюветы
эмалированные
5. Деревянная доска
6. Чашки Петри
7. Часовые стекла
8. Пинцеты разных
размеров (хирургические, анатомические, глазные)
9. Ножницы
10. Скальпели
11. Препаровальные иглы
разной толщины
12. Пипетки стеклянные
(пастеровские)
13. Резиновые груши
14. Фильтровальная
бумага
15. Марля, вата
16. Лупа
17. Бинокулярный
микроскоп типа МБС
18. Осветитель для
бинокуляра любой марки
19. Световой микроскоп
типа Биолам, Бимам
20. Осветитель к
микроскопу любой марки
21. Деревянный
молоток
3.1. Принципиальные
подходы и выбор метода исследования гидробионтов и продуктов их
переработки
3.1.1. При исследовании
рыбной продукции используют два основных подхода:
1) выявление личинок
гельминтов, видимых невооруженным глазом (плероцеркоиды, акантеллы,
личинки нематод размером >2 мм), путем тщательного осмотра всех
органов, полостей и тканей промежуточных (или резервуарных)
хозяев;
2) выявление личинок
гельминтов, плохо или не видимых невооруженным глазом (в основном
метацеркарий трематод и мелких нематод), путем исследования органов
и тканей - мест наиболее вероятной их локализации, с использованием
оптических средств. Уточнение видовой принадлежности личинок
гельминтов в обоих случаях ведется с применением световых
микроскопов типа МБС, Биолам или др.
3.1.2. Порядок
исследования и необходимость проведения всех или только отдельных
его этапов зависит от вида (видов) гельминта, встречающегося в
исследуемом гидробионте, типичной локализации личинок в нем
(таблицы 1-4, пункты 4.4.1, 4.4.2) и вида продукции.
3.1.2.2. Мороженую,
соленую, пряную, маринованную, вяленую, сушеную и копченую рыбную
продукцию после предварительной подготовки (п.п.2.2.2, 2.2.3)
исследуют по методике неполного гельминтологического вскрытия,
приведенной ниже (п.п.3.2-3.4). При обнаружении личинок гельминтов
следует определить их жизнеспособность (раздел 5).
3.1.2.3. Такие продукты
переработки рыбы, как пресервы, фарш, жареная или заливная рыба,
предварительно осматривают, а затем исследуют компрессорным методом
(п.3.2.11.3) или методом переваривания в искусственном желудочном
соке (п.3.2.11.4).
3.1.2.5. Икру (гонады),
как свежую, так и продукты ее переработки, исследуют в соответствии
с пунктом 3.2.6.
3.2. Методика
неполного гельминтологического исследования рыбы
3.2.1. Рыбу вскрывают в
большой эмалированной кювете или на широкой гладкой доске. Прежде
всего, проводят наружный осмотр рыбы для выявления личинок,
просвечивающих через кожу, извлекают их препаровальной иглой.
3.2.2. Затем вырезают
левую стенку полости тела и открывают доступ к последней. Для
этого, повернув рыбу брюхом кверху, делают короткий надрез вперед
от анального отверстия, куда затем вводят тупой конец ножниц и
разрезают рыбу вдоль срединной линии брюшка до угла нижней челюсти.
Делают дугообразный надрез, вырезают левую брюшную стенку, отделяют
ее. Рыбу кладут на правый бок. При внимательном осмотре полости
тела и внутренних органов могут быть обнаружены свободно лежащие
или под серозной, или в капсулах личинки цестод, нематод, скребней,
видимые невооруженным глазом.
3.2.3. Накладывают
лигатуры на кишечник близ анального отверстия и на пищевод в его
начальном отделе, чтобы содержимое пищеварительного тракта не вышло
наружу. Затем извлекают внутренние органы.
Вырезают яичники
(икру) или семенники (молоки), помещая их в отдельные чашки Петри,
и просматривают. Осматривают плавательный пузырь снаружи и внутри.
Вырезают и осматривают сердце, а также сердечную полость.
Компрессорным способом исследуют содержимое, оставшееся в полости
тела. Последнюю протирают марлевой салфеткой, соскабливают
брюшину.
3.2.5. При наружном
осмотре печени
невооруженным глазом можно заметить
плероцеркоиды цестод (Diphyllobothrium latum, Pyramicocephalus
phocarum, Eustrongylides exicisus)
и личинки анизакид.
Поджелудочную железу, селезенку, печень
осматривают снаружи
и также разрезают на пластинки толщиной около 3 мм.
3.2.6. У яичника
разрезают оболочку, содержимое соскабливают и компрессуют. Здесь
часто встречаются плероцеркоиды Diphyllobothrium latum.
Компрессорным методом удобно просматривать лишь мелкую икру. При
исследовании крупных икринок следует разбирать их препаровальными
иглами в чашке Петри с небольшим добавлением воды.
Соленую икру (зернистую,
паюсную, ястыковую) после предварительной подготовки (п.2.2.4)
исследуют таким же способом. При исследовании семенников
(молок)
тщательно просматривают их поверхность.
3.2.7. Последними из
внутренних органов исследуют почки,
лежащие вдоль
позвоночника. Так как ткань почек очень рыхлая, обычно не удается
выделить их целиком. Их соскабливают и по частям исследуют
компрессорным способом, добавляя несколько капель воды. Почки -
орган наиболее вероятной локализации метацеркарий Nanophyetus
salmincola.
3.2.8. Отрезают плавники
и просматривают их с использованием микроскопа МБС при увеличении
16-48 (окуляр 8х, 12х, объектив 2х, 4х) раз в небольшом количестве
воды. Здесь могут быть заметны в виде маленьких черных точек
пигментированные цисты Apophallus muhlingi
и Rossicotrema
donicum,
а также метацеркарии Metagonimus yokogawai
и
Metagonimus katsuradai.
Мышцы плавников исследуют
компрессорным способом (3.2.11.3).
3.2.10. После просмотра
внутренних органов с рыбы снимают кожу в направлении от головы к
хвосту, подрезая ее ножницами и оттягивая хирургическим пинцетом
или рукой. Осматривают внутреннюю сторону кожи, а часть мышц,
отделившихся с кожей, разрезают на пластинки или соскабливают и
компрессуют.
3.2.11.2. Метод
исследования мышечной ткани на просвет.
Используется также для
выявления личинок нематод, цестод, скребней. Для применения этого
метода необходимо изготовить специальное приспособление - столик с
прозрачной крышкой (размером не менее 40х40 см, лучше из молочного
или матового стекла) и подсветкой снизу. Можно пользоваться
столиком микроскопа типа МБС с нижней подсветкой.
-
Мышечную ткань рыбы (или филе) острым скальпелем или ножом нарезают
на пластинки толщиной не более 2-3 см.
-
Куски мышц помещают на верхнюю крышку столика и просматривают.
Яркость подсветки и толщина ломтиков в зависимости от степени
просвечиваемости мяса конкретного вида рыбы устанавливается опытным
путем.
-
Обнаруженных личинок гельминтов выделяют из мышечных тканей рыбы с
помощью препаровальных игл.
-
Выделенных личинок помещают в чашку Петри или часовое стекло с
физиологическим раствором.
3.2.11.3.
Компрессорный метод
3.2.11.3.1. Метод
применяется в основном для выявления метацеркарий трематод. Это
очень мелкие, незаметные или малозаметные невооруженным глазом
объекты, поэтому для их обнаружения и дифференциации видовой
принадлежности необходимы специальные микроскопические
исследования. Используют метод при просмотре мышечной ткани и
внутренних органов рыб, а также мышечной ткани ракообразных.
Возможно его использование при исследовании внутренних органов рыб
на наличие личинок нематод и цестод.
3.2.11.3.2. Целесообразно
компрессорному исследованию подвергать органы и участки мышечной
ткани наиболее вероятной локализации метацеркарий (табл.2).
Таблица 2
Дифференциальные признаки метацеркарий трематод сем. Opisthorchidae, Heterophyidae, Nanophyetidae u Echinostomatidae,..... *
________________
*
Брак оригинала. - Примечание изготовителя базы данных.
|
Вид гельминта |
Географическое распространение |
Виды рыб -
дополнительных хозяев |
Локализация в теле рыбы |
Размер (в мм) и характеристика цисты |
Характеристика
экскреторного пузыря |
Положение и подвижность личинки |
Строение и размеры освобожденной от цисты личинки (в мм) |
|
Opisthorchis felineus
|
Пресные водоемы Европы;
бассейны рек Обь, Иртыш, Енисей, реки Казахстана: Уил, Сары-Су,
Байконур, Уил-Жиланшик, Иргиз, Тургай, Нура, Шидерты, озера
Кургальджи |
Язь, елец, линь, красноперка,
плотва, верховка, голавль, лещ, чехонь, синец, гольяны обыкновенный
и Чекановского, подуст, белоглазка, уклея, густера, пескарь,
щиповка, жерех |
Верхний слой мышечной ткани (2-4 мм) и подкожная клетчатка в области спины, реже в плавниках, на жабрах, в чешуе |
0,17-0,25x0,21-0,33 овальная, реже округлая. Оболочка двуслойная, тонкая, прозрачная. Внутренняя по всему периметру равномерно прилегает к наружной |
Крупный, до 1/3 части тела. В лучах проходящего света в виде большого темного пятна |
Метацеркария |
0,44-1,36x0,15-0,30. РП* -
0,07-0,1; |
|
Metorchls bills |
Пресные водоемы
Калининградской и Московской областей, Украины, Зап. Сибири,
Казахстана, Сев. Кавказа, бассейн Волги |
Верхний слой мышечной ткани (2-4 мм) и подкожная клетчатка в области спины |
0,12-0,16x0,19-0,22 овальная. Оболочка тонкостенная двуслойная. Между оболочками цисты заметны промежутки |
До 1/4 объема задней части тела черный, округлый |
Движения замедленные |
0,27-0,33x0,05-0,1. |
|
|
Pseudamphistomum truncatum |
Пресные водоемы средней полосы России, Поволжья, Казахстана, Зап. Сибири, бассейны рек, впадающих в Черное море |
Язь, плотва, густера, лещ, линь, красноперка, вобла, синец |
0,39-0,45х0,40-0,54. Округлая
или слегка овальная. Оболочка тонкая прозрачная двуслойная. Слои
равномерно прилегают друг к другу |
Крупный черный округлый почковидный, занимает не более 1/3 тела |
Метацеркария сложена в средней части тела в вентральном положении, лежит в цисте свободно. Движения редкие |
1,28-1,54x0,34-0,40. БП, как
правило, крупнее РП. Тело покрыто шипиками, немного не доходящими
до заднего конца тела. Пищевод короткий, такой же длины, как
фаринкс. Развилка кишечника лежит много выше, чем у О. felineus,
приближена к РП. Зачатки семенников лежат почти на одном
уровне |
|
|
Clonorchis sinensis |
Пресные водоемы юго-восточных и центральных районов стран Дальнего Востока (Япония, Китай, Корея, Вьетнам). В России бассейны Амура и Уссури |
Карповые китайского
ихтиокомплекса (более 70 видов); корейские косатки, японская
оризия, риногобиус, элеотрис, тиляпия, малоротая корюшка,
сельдьилиша, змееголов |
0,13-0,15x0,15-0,18 шаровидной формы. Оболочка двуслойная, внутренняя равномерно прилегает к наружной |
Черный грушевидный, до 1/4 части тела. Заполнен плотно расположенными гранулами (до 10 мк) |
Слабые движения |
0,3-0,4x0,12-0,14. |
|
|
Apophallus muehlingi |
Бассейны Балтийского, Черного и Каспийского морей; реки Карпат и Закарпатья |
Карповые, окуневые; щука, судак |
Ткани плавников, жабры |
0,20-0,29x0,14-0,20,
эллипсовидной или шаровидной формы. Пигментированы в виде маленьких
черных точек |
Y-образной формы, задний конец S-образно изогнут |
0,50-0,58x0,10-0,12. Пищевод
доходит до половины длины тела. Кутикула покрыта мелкими
шипиками-чешуйками. Зачатки семенников лежат один за другим,
наискось по сторонам выделительного пузыря |
|
|
Rossicotrema donicum |
Реки, впадающие в Черное море, лиманы Азовского моря, низовье Волги, р. Тиса |
Окуневые, атериновые, реже карповые |
Ткани плавников и хвоста, реже в подкожной клетчатке и мышцах |
0,26-0,34х0,20-0,23,
эллипсовидной формы. Оболочка двуслойная, окружена кольцом черного
пигмента |
Y-образной формы |
0,49-0,53x0,13-0,15. РП -
0,035-0,045. |
|
|
Metagonimus yokogawai, M. katsuradai |
Пресные водоемы стран Дальнего
Востока (Япония, Китай, Корея, РФ); реки Карпат, Прикарпатья и
впадающие в Черное и Каспийское моря |
Свыше 60 видов рыб 7 семейств (карповые, сомовые, окуневые, лососевые, сиговые, хариусовые, щуковые) |
В чешуе, реже на плавниках,
жабрах, в подкожной соединитель- |
0,15-0,22 шаровидной или овальной формы. Оболочка двуслойная |
V-образной или мешковидной формы, черный, гранулы темно-бурые мелкие |
Движения активные |
0,32-0,40x0,09-0,1. |
|
Cryptocotyle lingua |
Балтийское и Баренцовое море, Северная Атлантика Произошла ошибка Платеж не был завершен из-за технической ошибки, денежные средства с вашего счета |